Základní pojmy. (MIC) - minimální inhibiční (supresivní) koncentrace - nejnižší koncentrace antibiotika, která potlačuje viditelný růst sledovaného mikroorganismu v EU. Doplňkový materiál pro lekci. Kritéria pro antimikrobiální aktivitu přípravku


Tento postup je v zásadě podobný stanovení MIC v kapalném médiu. Připravte několik Petriho misek s postupným ředěním antibiotika rozpuštěného v médiu. Přidejte roztavený agar, ochlaďte destičky pro ztuhnutí agaru. Kultury jedné nebo více bakterií se nanesou na povrch média a pak inkubace v termostatu po požadovanou dobu určuje minimální koncentraci antibiotika, při které je inhibován bakteriální růst. Jednou z výhod této metody oproti titraci v kapalném médiu je to, že různé části stejné destičky mohou být inokulovány různými druhy nebo kmeny bakterií. Hodnoty MIC pro několik bakterií lze stanovit v jednom experimentu (obr. 2.2).

  1. STANOVENÍ ANTIBIOTICKÉ AKTIVITY
ZPŮSOBEM ROZDĚLENÍ VE AGARU
Tato metoda se používá ke stanovení koncentrace antibiotika v roztoku. Je to následující. Disky vyrobené z filtračního papíru zvlhčené zkušebním roztokem antibiotika se umístí na povrch agarového média obsahujícího zředěnou suspenzi bakterií. Po vhodné inkubaci se povrch agaru, který byl zpočátku průsvitný, zakalil kvůli rozptylu světla z pěstovaných bakterií. Poloprůhledné zóny zůstávají pouze kolem disků filtračního papíru, protože antibiotikum difunduje do agaru a inhibuje bakteriální růst. Pokud je průměr těchto zón stanoven za přísně standardních podmínek, bude to funkce logaritmu koncentrace antibiotika. Za použití známých koncentrací antibiotik se vytvoří standardní křivka, ze které lze stanovit koncentraci antibiotika v neznámých roztocích (obr. 2.3). Někdy se místo kotoučů z filtračního papíru používají malé duté válce umístěné na povrchu agarového média a obsahující roztok antibiotika.
  1. FAKTORY OVPLYVŇUJÍCÍ DEFINICE
ANTIBIOTICKÉ ČINNOSTI
Aktivita antibiotik in vitro závisí na podmínkách stanovení (tabulka 2.1). Stanovení aktivity je ovlivněno faktory jako složení média, hustota inokula a počet bakteriálních buněk v inokulu (velikost inokula).

/

Tabulka 2.1. Faktory ovlivňující stanovení antibiotické aktivity
Testujte organismus
Střední složení (pH, ionty, sérum, antagonisté)
Velikost a hustota inokula (heterogenita populace, mechanismy inaktivace, požití antagonistických látek)
Inkubační podmínky (čas, teplota, provzdušňování)
A. SLOŽENÍ ŽIVOTNÍHO PROSTŘEDÍ
Jako příklad lze uvést antibiotikum, které inhibuje biosyntézu jedné z aminokyselin. Pokud je antibiotikum testováno v médiu bez této aminokyseliny, pak se zdá, že má velmi vysokou aktivitu, jinými slovy, má nízkou MIC. Při testování v „médiu obsahujícím aminokyselinu, jehož syntézu potlačuje a kterou bakterie mohou z média získat, se antibiotikum jeví jako neaktivní.
Kromě těchto specifických účinků jsou často pozorovány méně specifické účinky na životní prostředí, které přímo nesouvisejí s mechanismem účinku nebo chemickou strukturou antibiotika. Jedním zvláště zajímavým případem je přítomnost séra v médiu. Během stanovení MIC se zavádí do média, aby se vytvořily fyziologické podmínky, které se podobají podmínkám v krvi. Mnoho antibiotik se váže na sérové \u200b\u200bproteiny (zejména na albumin), v důsledku toho se snižuje počet volných molekul antibiotik, které mohou vstoupit do bakteriálních buněk. Antibiotická vazba na sérové \u200b\u200bproteiny obvykle koreluje s lipofilností určitých substituentů v molekule.
Je zřejmé, že podmínky pro stanovení MIC v kapalném médiu se liší od podmínek v hustém médiu, i když pouze proto, že agar je přítomen v hustém médiu. Agar obsahující SO3-rpynpy může antibiotikum adsorbovat, měnit jeho difuzní schopnost nebo adsorbovat rozpuštěný kyslík a některé složky živného média. Není proto překvapivé, že MIC antibiotika pro danou bakterii závisí na tom, zda je stanovena v kapalině nebo v pevném médiu, i když jsou tato dvě média, s výjimkou přítomnosti nebo nepřítomnosti agaru, shodná ve složení. Je také třeba si uvědomit, že fyziologie buněk se může lišit v závislosti na tom, zda rostou jednotlivě v kapalině nebo jako kolonie na povrchu hustého média.
PH média má velmi silný účinek na aktivitu antibiotik. Kromě sekundárních účinků, jako je účinek pH na rychlost růstu mikroorganismů a následně i
ve skutečnosti, nepřímo ovlivňujícím jejich citlivost, má hodnota pH velmi silný a přímý účinek na schopnost léku proniknout do bakteriální buňky. Například látky v neionizované formě difundují lépe přes buněčný steak a plazmatickou membránu než látky v ionizované formě. PH média, určující stupeň ionizace zásaditého nebo kyselého antibiotika, tak může přímo ovlivnit rychlost jeho pronikání do bakterií a následně i jeho účinnost.
B. Hustota a velikost bakteriálního inokula
Hustota inokula je počet inokulovaných bakterií vzhledem k objemu, ve kterém rostou. Obvykle se vyjadřuje jako počet buněk na ml kultury. Velikost inokula je celkový počet inokulovaných bakterií. MIC mnoha antibiotik není ovlivněna změnami v hustotě běžně používaného inokula (103-106 bakterií / ml). Ve skutečnosti i při velmi nízkých koncentracích antibiotika, například 0,01 μg / ml, zůstává počet molekul antibiotika k počtu bakteriálních buněk velmi vysoký (při koncentraci antibiotika s molekulovou hmotností 1000 rovnající se 0,01 μg / ml v 1 ml roztoku) obsahuje ~ 1012 molekul). Existují však některé výjimky. Například často je na vnějším povrchu bakteriální buňky adsorbováno mnoho molekul antibiotik. Pokud je hustota bakterií vysoká, počet volných molekul antibiotik, které mohou vstoupit do buňky, je výrazně snížen. Kromě toho je často potřeba velké množství antibiotických molekul k inhibici růstu jedné buňky. Jak bakterie rostou, syntetizují a uvolňují do média enzymy, které mohou zničit antibiotikum (například β-laktamázy, které působí na β-laktamová antibiotika; viz kapitola 4). Množství zničeného antibiotika je funkcí koncentrace enzymu v živném médiu, a proto závisí na velikosti inokula.
Na první pohled se zdá, že pokud je hustota kultury bakterií stejná, nezáleží na tom, zda je antibiotická aktivita zkoumána v malých objemech, například 0,25 ml nebo méně v miniaturizovaných systémech, nebo v objemu 10 ml v běžných laboratorních zkumavkách. Pokud jsou všechny bakterie v populaci identické, nebude ve výsledcích žádný rozdíl.
Když je celkový počet bakterií v inokulu velmi vysoký, je pravděpodobnější, že v médiu budou přítomny buňky, které jsou méně citlivé na antibiotikum. Růst všech vnímavých buněk bude potlačen, avšak méně citlivé (v zásadě to může být i jedna buňka) se množí a po inkubaci po dobu 18 hodin se

Tabulka 2.2. Faktory ovlivňující aktivitu některých antibiotik

populace bakterií s vysokou hustotou. Významná variabilita hodnoty MIC se změnou v počtu inokulovaných buněk obvykle naznačuje vysokou frekvenci mutant rezistentních na antibiotika (kapitola 4). Výskyt rezistentních mutantů není stejný pro různá antibiotika. V případě antibiotik používaných na klinice se pohybuje v rozmezí 10 ~ 7 až 10-10.
Tato část nepopisuje všechny faktory, které mohou ovlivnit aktivitu antibiotika proti určité bakterii (tabulka 2.2). Aby se využila inhibice bakteriálního růstu pro kvantifikaci antibiotické aktivity a pro získání údajů, které lze reprodukovat v různých laboratořích, je nutné, aby všechny podmínky byly pokud možno přesně definovány a standardizovány.

  • 4. Podstata pojmů: antibiotikum, probiotikum (eubiotikum).
  • 5. Podstata pojmů: baktericidní a bakteriostatický účinek.
  • 6. Podstata pojmů: prostředky volby (léky první linie, dlouhodobá aktiva) a rezervní fondy (léky druhé linie, alternativní drogy).
  • 7. Podstatou pojmů je minimální inhibiční (supresivní) koncentrace a minimální baktericidní koncentrace.
  • 8. Podstata pojmů citlivost a odolnost patogenu, post-antibiotický účinek.
  • 9. Determinanty selektivní toxicity chemoterapeutických látek.
  • 10. Podstata rozdílu mezi farmakodynamickými a chemoterapeutickými vlastnostmi.
  • 11. Základní principy racionální chemoterapie.
  • 12. Indikace kombinované antibiotické terapie.
  • 13. Principy kombinované antibiotické terapie.
  • 14. Principy klasifikace antibiotik.
  • 15. Hlavní mechanismy působení antibiotik.
  • 16. Jaké jsou alergické vedlejší účinky antibiotik?
  • 17. Vyjmenujte vedlejší účinky a komplikace antibiotické terapie spojené s farmakodynamickým účinkem.
  • 18. Jaké jsou vedlejší účinky a komplikace antibiotické terapie spojené s chemoterapií?
  • 19. Mechanismy vývoje rezistence mikroorganismů na antibiotika.
  • 20. Způsoby, jak překonat odolnost mikroorganismů vůči antibiotikům.
  • 21. Důvody neúčinnosti antimikrobiální terapie.
  • 22. Pojmenujte skupiny antibiotik, které inhibují syntézu buněčné stěny.
  • 31. Klasifikace cefalosporinů (uveďte vysoce aktivní léky).
  • 32. Vyjmenujte nejaktivnější antibiotika ze skupiny monobaktamů a karbapenemů.
  • 48. Pojmenujte chemoterapeutika s vysokou antipseudomonální aktivitou.
  • 49. Indikace pro jmenování tetracyklinů.
  • 50. Indikace pro jmenování chloramfenikolu.
  • 59. Nežádoucí účinky chloramfenikolu.
  • 60. Nežádoucí účinky makrolidů.
  • 77. Pojmenujte drogy 8-hydroxychinolinové deriváty.
  • 89. Komplikace nitrofurantoinové terapie.
  • 90. Nežádoucí účinky furazolidonu.
  • 91. Rozdíl v antibakteriálním spektru kyselin: nalidixová, oxolinová a pipemidická.
  • 93. Rozdíl a podobnost farmakokinetických vlastností kyselin: nalidixová, oxolinová a pipemidická.
  • 101. Farmakokinetické vlastnosti fluorochinolonů.
  • 102. Indikace pro jmenování fluorochinolonů.
  • 103. Nežádoucí účinky fluorochinolonů.
  • 104. Kontraindikace při jmenování fluorochinolonů.
  • 142. Pojmenujte prostředky používané pro giardiasis (giardiasis).
  • 147. Zvláštnosti terapie toxoplazmózou v případě ohrožení plodu.
  • 157. Jaké jsou inhibitory syntézy rna a pozdních virových proteinů.
  • 185. Indikace pro použití ribavirinu.
  • 194. Nežádoucí účinky gancicloviru.
  • 195. Nežádoucí účinky zidovudinu.
  • 196. Nežádoucí účinky aminoadamantanů.
  • 234. Trvání standardního průběhu léčby tuberkulózy.
  • 235. Na čem závisí délka léčby tuberkulózy a jak se mění?
  • 236. „Krátký“ průběh léčby tuberkulózy doporučený WHO. Jeho odůvodnění a trvání.
  • 237. Jaký je rozdíl mezi standardním a „krátkým“ (doporučeným WHO) průběhem léčby tuberkulózy?
  • 238. Zásady kombinování léků proti tuberkulóze.
  • 239. Pojmenujte kombinované léky pro léčbu tuberkulózy.
  • 240. Rifampicin, rifabutin. Srovnávací charakteristiky jejich antimykobakteriálního působení.
  • 241. Nežádoucí účinky isoniazidu.
  • 242. Nežádoucí účinky ethambutolu.
  • 7. Podstatou pojmů je minimální inhibiční (supresivní) koncentrace a minimální baktericidní koncentrace.

    Minimální inhibiční koncentrace (MIC)- minimální koncentrace chemoterapeutické nebo antiseptické látky, která způsobuje Úplné potlačeníviditelné pouhým okem Růsttohoto mikroorganismu na médiu za standardních experimentálních podmínek.

    Měřeno v μg / ml nebo v jednotkách. akce. Stanoví se setím zkušební kultury na pevné nebo kapalné médium obsahující různé koncentrace léčiva.

    Minimální baktericidní koncentrace (MBC)- minimální koncentrace chemoterapeutického nebo antiseptického činidla, které způsobuje Úplné zničeníbakterie za standardních experimentálních podmínek.

    Měřeno v μg / ml nebo jednotce. akce. Stanoví se setím zkušební kultury na pevném nebo kapalném živném médiu obsahujícím různé koncentrace léčiva. Aby bylo možné jej odlišit od MIC, od sterilních zón nebo průhledných zkumavek, inokulace se provádí na médiu bez drogy (vzhled růstu naznačuje statický efekt, jeho nepřítomnost označuje cidal).

    MBC a MIC se používají v chemoterapii a antisepticích pro výběr účinných léků a dávek pro daného pacienta.

    8. Podstata pojmů citlivost a odolnost patogenu, post-antibiotický účinek.

    Citlivost na patogen- nedostatek mechanismů rezistence na cholesterol; v tomto případě je reprodukce patogenu potlačena průměrnou terapeutickou dávkou překračující minimální inhibiční koncentraci 2-4krát.

    Odolnost proti patogenům- přítomnost mechanismů rezistence na cholesterol; růst patogenu není potlačen koncentrací léčiva, která má toxický účinek in vivo.

    Postantibiotický účinek- přetrvávající inhibice vitální aktivity bakterií po jejich krátkodobém kontaktu s antibakteriálním lékem.

    9. Determinanty selektivní toxicity chemoterapeutických látek.

    1) CS se hromadí v mikrobiálních buňkách v koncentracích mnohonásobně vyšších než v savčích buňkách

    2) CS působí na struktury, které jsou přítomny pouze v mikrobiální buňce (buněčná zeď, DNA gyráza typu II) a v savčích buňkách chybí.

    3) CS působí na biochemické procesy, které se vyskytují výhradně v mikrobiálních buňkách a v savčích buňkách chybí.

    10. Podstata rozdílu mezi farmakodynamickými a chemoterapeutickými vlastnostmi.

    1. Farmakodynamická terapie funguje na úrovni architektury funkčních systémů, její účinky jsou obvykle reverzibilní. Pro chemoterapii jsou nejcennějšími činidly ty, které mají nejvratnější účinek.

    2. Farmakodynamické látky indukují postupnou reakci tělesného systému, pro chemoterapeutické látky nejžádanější „všechny nebo nic“ účinky.

    3. Chemoterapie má etiotropní strategii zaměřenou na zničení patogenu nebo na transformovaných buňkách těla a farmakodynamická terapie může být etiotropní i patogenetická.

    11. Základní principy racionální chemoterapie.

    1. Původce musí být citlivý na AB

    Pravidlem „nejlepší nabídky“ jsou referenční tabulky, které berou v úvahu charakteristiky regionální populace týkající se antibakteriální citlivosti.

    2. AB by měla v centru pozornosti vytvořit terapeutickou koncentraci.

    3. Převážně přiměřený dávkovací režim v závislosti na:

    ü patogen

    ü dynamika klinického průběhu infekce

    ü lokalizace infekce

    ü trvání a povaha průběhu infekce (akutní, chronický nebo bakteriální transport)

    4. Optimální trvání antimikrobiální chemoterapie (příklad: streptokoková faryngitida se vyléčí za 10 dní, akutní nekomplikovaná gonokoková uretritida za 1-3 dny, akutní nekomplikovaná cystitida za 3 dny).

    Aby se předešlo nežádoucím reakcím, rozvoji superinfekce nebo rezistence, mělo by trvání léčby odpovídat období eradikace patogenu.

    5. Zohlednění faktorů pacienta:

    ü alergická anamnéza, imunokompetence

    ü funkce jater a ledvin

    ü tolerance AB při perorálním podání; dodržování

    ü závažnost stavu

    ü věk, pohlaví, těhotenství nebo kojení, užívající perorální antikoncepci

    ü nežádoucí účinky

    6. Kombinovaná antibiotická terapie.

    (MIC) - minimální inhibiční (potlačující) koncentrace - nejnižší koncentrace antibiotika, která potlačuje viditelný růst studovaného mikroorganismu in vitro (ve vývaru nebo agarovém živném médiu) za standardních experimentálních podmínek a vyjadřuje se v μg / ml (mg / l) nebo U / ml.

    Minimální baktericidní koncentrace (MBC) - nejnižší koncentrace antibiotika, které ve studii in vitro způsobí v určité době smrt 99,9% mikroorganismů z počáteční úrovně.

    Citlivý mikroorganismus - kmen mikroorganismu, který nemá žádné mechanismy rezistence na tento lék. Jeho použití na živném médiu je ukončeno, když se antibiotikum používá v terapeutické dávce.

    Středně odolný mikroorganismus - kmen mikroorganismu, jehož růst na živném médiu se zastaví, pouze pokud se antibiotikum použije v nejvyšší dávce. Léčba infekcí způsobených středně rezistentními mikroorganismy se provádí v nepřítomnosti alternativních léčiv, což je nejvyšší (maximální terapeutická) dávka antibiotika.

    Odolný mikroorganismus - kmen mikroorganismu, který má mechanismy rezistence na tento lék. Jeho růst na živném médiu se zastaví pouze při použití velmi vysokých koncentrací léčiva, které se v těle nemůže vytvořit kvůli vysoké toxicitě. Při léčbě infekcí způsobených tímto mikroorganismem klinický účinek terapie chybí, i když se použije nejvyšší dávka antibiotika. V tomto případě lze pozorovat vedlejší účinky antibiotika.

    Indikace pro stanovení citlivosti mikroorganismů na antibiotika:

    1) stanovení citlivosti na nové antibiotikum doporučené k použití;

    2) pravidelné sledování rezistence na antibiotika ve vybraných lékařských střediscích a v různých geografických regionech za účelem sledování šíření rezistence na antibiotika;

    3) zdůvodnění adekvátní antibiotické terapie u jednotlivých pacientů v následujících případech:

    a) izolace mikroorganismů z primárně sterilních tekutin, lidských orgánů a tkání;

    b) při izolaci mikroorganismů z primárních nesterilních biotopů by posouzení citlivosti mělo předcházet posouzení klinické významnosti izolovaného mikroorganismu;

    c) infekce rezistentní na léky empirické terapie;

    d) jedinečné infekce a nedostatek zkušeností s jejich léčbou;

    e) infekce vyžadující prodlouženou terapii (rezistence na antibiotika je detekována každý týden terapie, protože je možná změna patogenů).

    Stanovení citlivosti mikroorganismů na antibiotika je nepraktické:

    1) pro zástupce normální lidské mikroflóry, jsou-li izolovány od přirozených stanovišť;

    2) pro typy mikroorganismů, ve kterých nebyly popsány žádné rezistentní formy na jedno nebo druhé antibiotikum. Například Streptococcus pyogenes je citlivý na penicilin, proto není vhodné provádět stanovení citlivosti na tyto léky v každodenní praxi.

    Obsah subjektu "Metody pro stanovení citlivosti na antimikrobiální látky. Vedlejší účinky antibiotické terapie.":








    Metody pro stanovení citlivosti na antimikrobiální látky. Minimální inhibiční koncentrace (MIC). Metoda sériového ředění v kapalných médiích.

    Kritéria pro aktivitu konkrétního léčiva jsou minimální inhibiční koncentrace (MICje nejnižší koncentrace léčiva, která inhibuje růst testované kultury a minimální baktericidní koncentrace (MBK) - nejnižší koncentrace léku způsobující baktericidní účinek.

    Metoda sériového ředění v kapalných médiích

    Metoda sériového ředění v kapalných médiích umožňuje instalaci minimální inhibiční koncentrace (MIC) a minimální baktericidní koncentrace (MBK) přípravek na izolovaný patogen. Výzkum může být prováděn v různých objemech kultivačního média (1-10 ml). Používejte tekutá živná média, která splňují nutriční potřeby patogenu. Ve zkumavkách (obvykle osm) připravte sérii dvojitých ředění léčiva na živném médiu. Koncentrace je snížena z 128 na 0,06 μg / ml (základní koncentrace se může lišit v závislosti na aktivitě léčiva). Konečný objem média v každé zkumavce je 1 ml. Jako kontrola slouží zkumavka obsahující čisté kultivační médium. Do každé zkumavky se přidá 0,05 ml fyziologického roztoku obsahujícího 106 / ml mikrobiálních buněk. Zkumavky se inkubují 10 až 18 hodin při 37 ° C (nebo dokud se v kontrolní zkumavce neobjeví bakteriální růst). Po stanoveném období se výsledky vezmou v úvahu změnou optické hustoty média vizuálně nebo nefelometricky. Je také možné použít modifikovanou metodu pomocí média doplněného glukózou a indikátorem. Růst mikroorganismů je doprovázen změnou pH média a podle toho také barvou indikátoru.

    Název látek

    Hraniční úroveň
    (ng / ml)

    Amfetaminová skupina

    Amfetamin

    Metamfetamin

    Methylendioxyamfetamin (MDA)

    Další látky ze skupiny amfetaminů

    Skupina opiátů

    Morfium

    Kodein

    6-monoacetylmorfin

    Benzodiazepinová skupina

    Oxazepam

    Diazepam

    Nordiazepam

    Midazolam

    Fenazepam

    Další látky ze skupiny benzodiazepinů

    Skupina barbiturátů

    Barbamil

    Etaminální sodík

    Chemikálie jiných skupin

    Kyselina 11-nor-A 9-tetrahydrokanabinolová (hlavní metabolit A 9-tetrahydrokanabinolu)

    Kokain a jeho metabolity

    Metadon a jeho metabolity

    Propoxyfen a jeho metabolity

    Buprenorfin a jeho metabolity

    d-lysergid (LSD, LSD-25)

    Fentanyl a jeho metabolity

    Methaqualone

    Phencyclidin

    Tabulka 2 přílohy postupu pro provedení lékařského vyšetření na stav intoxikace (alkoholické, omamné nebo jiné toxické), schválená nařízením Ministerstva zdravotnictví Ruské federace (návrh), „Úrovně prahových hodnot obsahu omamných látek, psychotropních látek, jiných chemických látek a jejich metabolitů, stanovené metodami potvrzující analýza ".

    Poznámka: prahová úroveň Je minimální koncentrace látky (jejího metabolitu) v biologickém objektu stanovená metodami předběžné nebo konfirmační analýzy, po jejímž zjištění se výsledek zkoušky považuje za pozitivní.

    Ve skutečnosti podobná tabulka s názvem „ Mezní hodnoty pro potvrzovací zkušební metody pro analýzu moči"je uveden v Ústřední chemické a toxikologické laboratoři na Katedře analytické a forenzní toxikologie Státního vzdělávacího ústavu vyššího odborného vzdělávání. První moskevská státní lékařská univerzita pojmenovaná po I. M. Sechenově (TsKhTL GOU VPO) První moskevská státní lékařská univerzita pojmenovaná po I. M. Sechenově) Ministerstva zdravotnictví Ruské federace Federace ze dne 30. srpna 2011 č. 179-25 / 12I, kde jsou však mimo jiné uvedeny koncentrace fenobarbitalu (1 000 ng / ml), dalších látek ze skupiny barbiturátů (100 ng / ml) a kotininu (100 ng / ml). ). Podle daného TsKhTL GOU VPO je nejprve MGMU. IM Sechenov, v souladu s odstavcem 2 nařízení Ministerstva zdravotnictví a sociálního rozvoje Ruské federace ze dne 27. ledna 2006 č. 40 "O organizaci chemických a toxikologických studií při analytické diagnostice přítomnosti alkoholu, drog, psychotropních a jiných toxických látek v lidském těle látky ", vyvinuly a schválily požadavky na provádění chemických a toxikologických studií při analytické diagnostice přítomnosti omamných látek, psychotropních a jiných toxických látek v lidském těle."

    Zejména podle bodu 12 informačního dopisu je při provádění lékařských prohlídek řidičů vozidel, zkoušení studentů, provádění chemických a toxikologických studií při uplatňování od občanů a v jiných případech stanovených zákonem studium orální tekutiny (slin) nepřijatelné, protože neumožňuje spolehlivě zjistit skutečnost přítomnost omamných látek, psychotropních a jiných toxických látek v lidském těle. Kontrolované látky mohou být stanoveny v ústní tekutině (slinách) v časovém intervalu nepřesahujícím několik hodin od okamžiku použití.

    Požadavky na technické prostředky používané k detekci omamných, psychotropních a jiných toxických látek (jejich metabolitů) ve vzorcích moči během předběžných chemických a toxikologických studií (Příloha č. 1 k Metodickým doporučením: Pravidla provádění chemických a toxikologických studií na přítomnost skupina studentů ve všeobecných vzdělávacích organizacích a profesních vzdělávacích organizacích a vzdělávacích institucích vysokoškolského vzdělávání za účelem včasného odhalení nedovolené konzumace omamných a psychotropních látek, omamných látek, psychotropních a jiných toxických látek (jejich metabolitů) / Vývojář: Asociace odborníků a organizací laboratorní služby „Federace“ laboratorní medicína "pod vedením hlavního odborníka v oboru analytická a forenzní toxikologie Ministerstva zdravotnictví Ruska, doktora chemických věd, profesora B. N. Izotova a hlavního odborníka v oboru klinického lékařství laboratorní diagnostika Ministerstva zdravotnictví Ruska, MD, profesor A.G. Kochetov // Moskva, 2015)

    Název skupin látek

    Koncentrace (ng / ml)

    Opiáty (6 monoacetylmorfin, morfin, kodein, desomorfin atd.)

    Kanabinoidy

    Fenylalkylaminy (amfetamin, metamfetamin, mefedron atd.)

    Methadon

    Benzodiazepiny

    MDMA

    Kokain

    Barbituráty

    Cotinine

    Syntetické kanabinoidy

    Katinony

    Ethylglukuronid

    Požadavky na technické prostředky používané k detekci omamných látek, psychotropních a jiných toxických látek (jejich metabolitů) ve vzorcích moči při provádění potvrzujících chemických a toxikologických studií (dodatek č. 2 k výše uvedenému zdroji)

    Název skupin látek

    Koncentrace (ng / ml)

    Amfetaminová skupina

    Amfetamin

    Metamfetamin

    Methylendioxyamfetamin (MDA)

    Methylendioxymethamphetamine (MDMA)

    Další látky ze skupiny amfetaminů

    Skupina opiátů

    Morfium

    Kodein

    6-monoacetylmorfin

    Další látky ze skupiny opia

    Benzodiazepinová skupina

    Oxazepam

    Diazepam

    Nordiazepam

    Midazolam

    Fenazepam

    Další látky ze skupiny benzodiazepinů

    Skupina barbiturátů

    Fenobarbital

    1000

    Barbamil

    Etaminální sodík

    Další látky skupiny barbiturátů

    Látky jiných skupin

    Kyselina 11-nor-A9-tetrahydrokanabinolová (hlavní metabolit A9-tetrahydrokanabinolu)

    Benzoylecgonin (metabolit kokainu)

    Methadon

    Propoxyfen

    Buprenorfin

    LSD

    Fentanyl

    Methaqualone

    Phencyclidin

    Cotinine

    Syntetické kanabinoidy

    Katinony

    Ethylglukuronid

    Současně při provádění obhajoby v případech správních deliktů podle článků 12.8 a 12.27, části 3 správního řádu Ruské federace, jakož i v případech trestní odpovědnosti při řízení vozidla při intoxikaci (články 264 a 264.1 trestního zákoníku Ruské federace), neměli bychom zapomenout na to, že že správní odpovědnost nastává v případě přítomnosti omamných látek nebo psychotropních látek v lidském těle, bez ohledu na jejich koncentraci v lidském těle, v krvi a moči.

    Vzhledem k výše uvedenému je identifikace v rámci lékařských vyšetření, chemických a toxikologických studií, forenzních chemických studií narkotik drogy, psychotropní a toxické látky a látky, které způsobují intoxikaci, dokonce i na úrovni „limitu detekce použité metody“, je základem pro uvedení řidiče vozidla do správní nebo trestní odpovědnosti podle příslušných článků Kodexu Ruské federace o správních deliktech a / nebo trestních RF kódu.

    Pro informaci - " "



    mob_info